Ювелирное обозрение

Наверное, ни одно обсуждение способов борьбы с клопами на более-менее популярном форуме не обходится без двух-трех сообщений о том, что, дескать, к тем или иным средствам клопы уже «привыкли», их такие средства «не берут» и применять нужно что-то посовременнее, да помощнее.

Такое привыкание называют разными терминами – иммунитетом, устойчивостью, резистентностью, и почти всегда пытаются именно им оправдать неудачи в выведении паразитов.

А существует ли такая резистентность в действительности? И может быть такое, что клопы конкретно в вашем жилище устойчивы к тому или иному препарату?

Истинная резистентность клопов к инсектицидным препаратам

Резистентностью клопов к инсектицидам называется выработанный в организме насекомых механизм нейтрализации инсектицидных веществ, который позволяет им выживать при контакте с этими средствами. То есть такая устойчивость (иммунитет, если хотите) действительно существует.

Однако резистентность клопов к инсектицидам развивается очень медленно. Фактически, она является эволюционным приобретением, выработанным под действием конкретного инсектицида, как фактора окружающей среды.

Другими словами, устойчивость постельных клопов, например, к дихлофосу развивается так же, как развивалась их бескрылость. Все крылатые особи этого вида погибали, будучи очень уязвимыми для хозяев из-за своего высокого тела, а те особи, у которых крылья оказывались меньше, имели больше шансов на выживание и передачу своих генов потомству. Так со временем длина крыльев у постельных клопов уменьшалась, пока они не исчезли вовсе.

Так же инсектицид уничтожает всех клопов, а выживают при его действии только те, у которых в результате мутаций развиваются механизмы нейтрализации отравляющих веществ. Как правило, вопрос здесь лишь в одном новом для клопа белке, который при контакте с инсектицидом обезвреживает его. Особь, у которой такой белок в организме появляется, не умирает под действием инсектицида, когда все остальные клопы в квартире погибают. Если эта особь – оплодотворенная самка, то из её яиц минимум четверть разовьется в таких же устойчивых личинок, а эта четверть при следующем контакте со средством выживет и даст уже поколение клопов, полностью резистентных к препарату.

Учитывая скорость размножения этих паразитов, развитие такой устойчивости занимает в среднем 6-10 месяцев. Причем происходить это может как в отдельно взятой квартире, так и в стенах всего многоквартирного дома. Тут стоит отметить, что некоторые инсектицидные средства травят клопов практически со 100%-й вероятностью. Примером такого средства является Палач, подробнее о нем см. на https://palach.com.ua/ – при правильном его использовании у паразитов практически нет шансов выжить.

Могут ли клопы «привыкнуть» к средству после одной неудачной обработки?

А вот идея о том, что если клопов средством потравить плохо и не «дотравить», то они выработают к нему иммунитет, не верна.

Дело в том, что «иммунитет» к инсектицидам не может развиваться, поскольку большинство из них являются простыми соединениями, а иммунитет – это способность организма противостоять возбудителям инфекций.

То есть на практике невозможна ситуация, когда клопов травят, из-за низкого качества обработки часть из них выживает, «привыкает» к средству и больше на него не реагирует. Если вы при первой обработке клопов не дотравили, то спокойно можно «дотравить» их повторно.

Другое дело, что такое «не дотравили» может как раз и быть связано с тем, что уже до обработки в квартире находились клопы, уже имеющие резистентность к примененному средству. Они и выжили, и у обработчиков создается впечатление, что они «закалились в боях» и именно после травли перестали реагировать на средство.

Но суть не в этом. Проблема в том, что таких клопов, которые выжили после первой обработки, все равно нужно травить. Как это сделать?

Травим резистентных клопов

Устойчивость у клопов может развиваться к любым средствам, кроме тех, которые действуют термически или механически. Например, к кипятку эти паразиты в любом случае не смогут адаптироваться. А вот любая отрава с той или иной вероятностью может дать «осечку».

Если после первой обработки в жилье остались взрослые клопы и крупные нимфы, есть вероятность, что они устойчивы к примененному средству. Значит, их нужно травить повторно препаратом с иным действующим веществом, нежели то, которое содержалось в средстве для первой обработки.

В идеальном случае препарат для повторной обработки должен содержать инсектицид иного класса. Например, если для первой обработки использоваться Лямбда-Зона (препарат на основе пиретроида), то вторую обработку нужно проводить средством на основе фосфорорганических соединений – малатиона, хлорпирифоса, фентиона. Вероятность того, что клопы резистентны сразу к двум веществам, практически исключена, а значит, средство на основе иного инсектицида их уничтожит (при условии грамотного проведения дезинсекции, разумеется).

Если же и первую обработку хочется провести «с гарантией», то для неё нужно применять средство, к которому резистентности клопов либо не известно вовсе, либо она крайне редка. Например, опытные дезинсекторы не рекомендуют применять от клопов препараты на основе пиретроидов, потому что к ним многие клопы устойчивы. Оптимальными против постельных клопов считаются средства на основе фосфорорганических соединений – фентиона, хлорофоса, карбофоса. Для того же фентиона известно лишь три случая выявленных устойчивых популяций клопов, все три – в разных частых Москвы. При этом по данным интернет-магазинов препарат Палач на основе фентиона травит клопов всегда и у всех покупателей. То есть именно такие препараты должны применяться в первую очередь, поскольку с ними наиболее высоки шансы уничтожить клопов с первого раза.

Определение уровня чувствительности синантропных насекомых к инсектицидам

Дата введения 2008-08-01

1. РАЗРАБОТАНЫ ФГУН НИИ дезинфектологии Роспотребнадзора (С.А.Рославцева, О.Ю.Еремина, Ю.В.Лопатина, Е.И.Баканова, А.И.Фролова, И.В.Ибрагимхалилова, М.А.Алексеев, Е.Н.Басова).

2. Рекомендованы к утверждению Комиссией по государственному санитарно-эпидемиологическому нормированию при Федеральной службе по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека (протокол от 3 апреля 2008 г. N 1).

3. УТВЕРЖДЕНЫ Руководителем Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека, Главным государственным санитарным врачом Российской Федерации Г.Г.Онищенко 4 мая 2008 г. Введены в действие с 1 августа 2008 г.

4. ВВЕДЕНЫ ВПЕРВЫЕ.

1. Область применения

1. Область применения

Методические указания предназначены для специалистов органов и учреждений государственного санитарно-эпидемиологического надзора, разрабатывающих стратегию и тактику применения инсектицидов и занимающихся дезинфекционной деятельностью, исследованием инсектицидной активности различных веществ и препаративных форм на их основе, рекомендуемых для целей медицинской дезинсекции, a также могут быть использованы другими организациями.

2. Общие положения

Устойчивость насекомых к инсектицидам подразделяется на природную и приобретенную. Насекомые на разных стадиях развития обладают различной природной чувствительностью к инсектицидам, относящимся к разнообразным группам химических веществ. Так, куколки насекомых значительно устойчивее к действию инсектицидов по сравнению с другими стадиями развития. Чувствительность к инсектицидам зависит от физиологического состояния насекомых и может также различаться у голодных и напитавшихся особей.

Приобретенная устойчивость к инсектицидам напрямую связана с инсектоакарицидным прессом. Формирование резистентных популяций вредных организмов под воздействием пресса пестицидов является одной из центральных проблем их эффективного использования. Резистентность (приобретенная устойчивость) рассматривается как адаптация популяции определенного вида насекомых к воздействию пестицидов, и поэтому она входит в круг вопросов, относящихся к химической экологии.

Резистентность является общебиологическим понятием. В настоящее время приобретенная устойчивость к инсектоакарицидам, фунгицидам и гербицидам выявлена как у вредных, так и у полезных организмов. Среди вредных членистоногих резистентные популяции обнаружены у вредителей сельскохозяйственных культур и животных, а также у членистоногих, имеющих эпидемиологическое и санитарно-гигиеническое значение.

Количество видов членистоногих, у которых сформировались резистентные к инсектоакарицидам популяции, неуклонно возрастает. Если в 1945 г. были обнаружены резистентные популяции членистоногих, относящихся к 12 видам, то в 1967 г. – к 224, в 1975 г. – к 364 видам. По данным Дж. Кригер [19], более 500 видов насекомых к середине 80-х годов XX в. имели популяции, резистентные к инсектицидам.

Наиболее полный перечень видов членистоногих, имеющих эпидемиологическое и санитарно-гигиеническое значение, у которых выявлены резистентные популяции, приведен в 15-м Докладе Комитета Экспертов ВОЗ [11]. Согласно этим данным у 147 видов членистоногих, имеющих эпидемиологическое и санитарно-гигиеническое значение, сформировались популяции, резистентные к различным по химической структуре инсектоакарицидам. В 2000 г. сообщалось о 198 видах таких членистоногих [17]. В 2006 г. эти материалы были дополнены [12].

Определение уровня чувствительности членистоногих к используемым и рекомендуемым действующим веществам (ДВ) инсектицидов является необходимым элементом при планировании и осуществлении программ истребительных мероприятий. Резистентность – динамичное явление, развивающееся в различных пределах у разных видов и даже у одного и того же вида при различном прессе применяемых инсектицидов [2].

Разработанные методические указания посвящены определению уровней чувствительности основных видов насекомых, имеющих эпидемиологическое и санитарно-гигиеническое значение.

Для обнаружения и последующего мониторинга резистентности у популяций насекомых, собранных на объектах, необходимо пользоваться относительно простыми методами, позволяющими ограниченному по численности персоналу проводить исследования в короткие сроки. Оперативным методом, рекомендованным Комитетом экспертов ВОЗ по инсектицидам [14], является использование диагностических (дискриминирующих) концентраций или доз.

В основу данных методических указаний положены стандартные методы, рекомендуемые ВОЗ, в ряде случаев – модифицированные в НИИ дезинфектологии (НИИД) или в Институте медицинской паразитологии и тропической медицины им. Е.И.Марциновского (ИМПиТМ). Главным образом эти изменения касаются времени контакта насекомых с тест-поверхностями, обработанными диагностическими дозами. Согласно методам ВОЗ контакт насекомых с обработанными тест-поверхностями продолжается от нескольких часов (5-10) до нескольких суток (1-5). Однако некоторые насекомые в естественных условиях не контактируют столь длительное время с поверхностями, обработанными инсектицидами, поэтому для установления уровня чувствительности природных популяций ряда видов насекомых целесообразно определить не время контакта членистоногого с поверхностью, обработанной диагностической дозой или концентрацией, а концентрацию (дозу) инсектицида, которая за относительно короткий отрезок времени обеспечивает их максимальную смертность.

В настоящих методических указаниях изложены методы определения уровня чувствительности к инсектицидам рыжих тараканов (Blattella germanica), платяных вшей (Pediculus humanus humanus), постельных клопов (Cimex lectularius), блох на примере крысиной блохи (Xenopsylla cheopis), комнатных мух (Musca domestica), комаров (личинок и имаго) родов Culex, Aedes и Anopheles.

Изучение уровня чувствительности насекомых, собранных на объектах, позволит оптимизировать комплекс дезинсекционных мероприятий.

2.1. Приготовление растворов инсектицидов

Для топикальной обработки насекомых используют не менее 5 концентраций ацетоновых или спиртовых растворов ДВ инсектицидов, полученных путем последовательного разбавления (с шагом разбавления 2 или другим в зависимости от необходимости).

Тест-поверхности обрабатывают, исходя из норм расхода 100 мл/м (1 мл/дм ) впитывающей поверхности (фанера, ткань, фильтровальная бумага и др.) и 50 мл/м (0,5 мл/дм ) невпитывающей поверхности (стекло). Для обработки контрольных тест-поверхностей используют те же растворители, что и в опытных вариантах.

2.2. Расчет среднесмертельных концентраций и доз

Показатели или ( или и другие величины) для каждого инсектицида определяют методом пробит-анализа путем построения линии регрессии "доза-смертность" ("концентрация-смертность") [10].

Для пересчета величины ( ), % в величину ( ), мкг/г определяют среднюю массу одного насекомого в мг. Для этого до опыта взвешивают не менее 50 предварительно анестезированных особей. Вычисление проводят по формуле:

где – концентрация, СК , %;

– объем нанесенного раствора, мкл;

– масса насекомого, мг.

2.3. Использование диагностической концентрации

По данным экспериментов, проведенных в лабораторных условиях, рассчитывают диагностические концентрации (ДК) или дозы (ДД). Дозу или концентрацию, равную двум дозам или концентрациям, вызывающим смертность 95% (99%) членистоногих, считают диагностической [18].

Обработка насекомых растворами инсектицидов в диагностической концентрации должна проводиться в 3-5 повторностях. Случайное появление оставшихся в живых особей (например, в 3-х последовательных опытах) служит сигналом, указывающим на необходимость дальнейших исследований. Таким образом, можно обнаружить наличие приобретенной резистентности и установить приблизительно, какую часть в популяции членистоногих составляют резистентные особи. Если в эксперименте погибли все особи, то популяция является чувствительной. Если погибли 80% особей, то в популяции содержится 20% устойчивых особей и т.д. Если в эксперименте погибли 50% особей, то популяция является устойчивой и необходимо установить показатель резистентности ( ).

Данные, полученные при использовании диагностической концентрации, можно использовать для практических целей при принятии решения о возможности использования данного инсектицида для обработки объекта. Так, если при обработке насекомых растворами инсектицидов в диагностической концентрации погибли менее 40% насекомых, такое средство не следует использовать на данном объекте.

2.4. Критерии оценки уровня чувствительности насекомых, собранных на объектах

Оценку уровня чувствительности насекомых, собранных на объектах или с человека, проводят путем вычисления показателей резистентности ( ) – соотношения показателей ( , , ; , , ), полученных для инсектарной культуры и популяции, собранной на объекте, например:

В зависимости от величины популяция оценивается как "чувствительная", "толерантная" или "устойчивая".

Поскольку уровень чувствительности к инсектицидам у членистоногих в популяциях, собранных на объектах, может значительно различаться, их относят к одной из приведенных ниже групп по степени установленной у них устойчивости. Чувствительность насекомых инсектарной культуры принимают за единицу [18].

I группа. менее 1 – насекомые высокочувствительны к инсектициду.

II группа. равен 1 – насекомые чувствительны к инсектициду.

III группа. в пределах 2-10 – насекомые толерантны к инсектициду.

IV группа. 10 и более – насекомые резистентны к инсектициду.

2.5. Статистическая обработка полученных результатов

Смертность насекомых в опыте в каждой повторности и в контроле вычисляют в процентах по отношению к общему количеству насекомых в повторности. В случае смертности в контроле 5-20% особей в результаты опытов вводят поправку по формуле Аббота [4]. Если смертность членистоногих в контроле превышает 20%, результаты опыта считают недействительными.

Доверительные пределы к показателям ( ) и стандартные отклонения рассчитывают по П.В.Попову [10], П.Ф.Рокитскому [13], Г.Ф.Лакину [4] и др.

2.6. Наборы для опытов

Для проведения опытов необходима биологическая лаборатория, оснащенная термостатами, холодильниками, аналитическими весами, вытяжными шкафами и пр.

Набор для проведения опытов состоит из следующих предметов:

1) стаканы стеклянные или полимерные; 2) бутылки полимерные объемом 2 л; 3) стеклянные пластины размером (10х20) см; 4) чашки Петри 10 см; 5) чашки Петри 4 см; 6) часовые стекла или стеклянные чашки; 7) экспозиметры ( 9 см) согласно МУ 3.5.2.1759-03 [9]; 8) пипетки; 9) цилиндры; 10) сосуды для отстаивания воды; 11) пробирки стеклянные химические; 12) штативы для пробирок; 13) микродозаторы (петли) или микропипетки; 14) эксгаустеры; 15) стеклянные воронки; 16) энтомологический сачок 4 см; 17) вазелин технический; 18) мелкоячеистая марля для завязывания стаканов; 19) крышки пластиковые с маленькими отверстиями; 20) хлопчатобумажная ткань; 21) резиновые кольца; 22) глазной пинцет; 23) мягкий пинцет; 24) флаконы пенициллиновые с резиновыми крышками; 25) химические пробирки с пробками; 26) лейкопластырь; 27) маркер; 28) ацетон; 29) этиловый спирт; 30) эфир медицинский; 31) резиновые перчатки; 32) фильтровальная бумага (фильтры обеззоленные); 33) ножницы; 34) вата; 35) пробит-логарифмическая бумага для построения линий регрессии; 36) грифельный карандаш; 37) прозрачная линейка; 38) журнал учета данных опытов.

3. Методы определения уровня чувствительности к инсектицидам рыжих тараканов Blattella germanica

_______________
* В бумажном оригинале слова "Blatella germanica" выделены курсивом. – Примечание изготовителя базы данных.

В лабораторных условиях определение уровня чувствительности и диагностической концентрации (дозы) ДВ инсектицида проводят на имаго рыжих тараканов лабораторной чувствительной культуры методом топикального нанесения инсектицида и методом контактирования с обработанными тест-поверхностями.

3.1. Установление исходного уровня чувствительности и диагностических концентраций методом топикального нанесения растворов инсектицидов

Опыты проводят на однородном биоматериале – самцах рыжих тараканов в возрасте от 5 до 15 дней после имагинальной линьки. Для определения качества биоматериала насекомых за 24 ч до начала опыта отбирают из емкости для выращивания и отсаживают в плоский кристаллизатор с кормом и водой.

Ацетоновые или спиртовые растворы ДВ инсектицида наносят из микропипетки или с помощью микродозатора на мезостернум (средне-грудь) анестезированных тараканов по 1 мкл на каждое насекомое. В контрольном варианте на тараканов наносят 1 мкл растворителя, использованного при приготовлении растворов инсектицида. После нанесения инсектицида насекомых помещают в чистые стаканы (стеклянные или полимерные) со смазанными вазелином краями.

Опыты проводят не менее чем в трех повторностях для каждой концентрации. В каждой повторности используют не менее 10 насекомых, в контрольном варианте – не менее 20 особей. Опыты проводят при температуре воздуха (23±2) °С и относительной влажности 50-70%. Учет гибели насекомых проводят через 24 и 48 ч. В категорию "пораженных" включают мертвых и парализованных насекомых. Парализованными считают тараканов, не способных к самостоятельному передвижению.

Исходный уровень чувствительности самцов рыжих тараканов лабораторной чувствительной культуры приведен в табл.1.

Исходный уровень чувствительности самцов рыжих тараканов лабораторной чувствительной культуры и диагностические концентрации при топикальном нанесении ДВ инсектицидов (учет через 24 ч)

Резистентность насекомых к действующим веществам входящих в состав инсектицидных, акарицидных и прочих препаратов, направленных на их уничтожение можно разделить на две основные группы: врождённая и приобретённая.

Приобретённая резистентность – это устойчивость насекомых к определённым действующим веществам возникшая либо результате кратковременного контакта с обработанной поверхностью, либо в результате контакта с незначительной концентрацией, недостаточной для наступления гибели паразита. Если провести параллель с человеческим организмом, то приобретённую резистентность у насекомого можно сравнить с вакцинацией человека от гриппа, кори и прочих инфекций.

Врождённая резистентность – это устойчивость насекомых к действующим веществам которую они приобрели от предыдущего поколения, которое выжило после воздействия на них препарата, содержащего данное вещество. Данная устойчивость вырабатывается у насекомых на генном уровне и имеет свойство передаваться всем последующим поколениям.

Популяция насекомых может быть устойчива: 1. К препаратам содержащих определённое действующее вещество (например, резистентность к циперметрину) 2. Одновременно ко всем действующим веществам относящихся к одной группе по их химическому строению (например, резистентность к фосфорорганическим соединениям) 3. К инсектицидам и акарицидам относящихся к одной группе по их механизму воздействия (например, устойчивость ко всем препаратам блокирующих деятельность тех или иных ферментов в организме насекомого).

С резистентными насекомыми очень сложно бороться! Так как в бытовых условиях невозможно установить есть ли у данной популяции резистентность или же нет. И если резистентность есть, то к какому действующему веществу или же группе препаратов устойчивы те или иные вредители. Именно поэтому дезинсекцию нужно проводить так, чтобы не допустить возможность возникновения резистентных особей… Ни в коем случае не занижать концентрацию ДВ, обрабатывать всё помещение целиком, а также все возможные пути отхода и проникновения паразитов, а при отсутствии результата в первую очередь необходима грамотная ротация инсектицидов, а не просто «слепая» замена одного препарата на другой.

Если попытаться разобраться в причинах резистентности насекомых на примере обычной квартиры, то можно выделить несколько основных причин в следствии которых насекомые становятся крайне устойчивыми к дезинсекционным обработкам. 1. Массовое применение бытовых инсектицидных препаратов, купленных в обычных магазинах 2. Некачественная обработка санитарной службы, проводимая либо с занижением рекомендуемой концентрации, либо малоэффективными препаратами 3. Так называемый человеческий фактор. К нему можно отнести несколько подпунктов: Частичная (неполная) обработка квартир, Плохая подготовка помещения перед проведением обработки, Несоблюдение рекомендаций данных дезинфектором после проведённой дезинсекционной обработки. На практике это выглядит следующим образом…

У вас на кухни появились тараканы. В начале их немного, и вы решаете, что сможете справиться с ними самостоятельно. Первым делом вы идёте в магазин и покупаете средство от тараканов в виде аэрозоля или концентрата, который необходимо разбавить с водой и обрабатываете места скопления насекомых… под раковиной, под ванной и т.д. В чём же здесь может быть ошибка? Препараты, продающиеся в магазинах, содержат действующие вещества аналогичные тем, которые используются в профессиональных инсектицидных препаратах, только в меньшей (более безопасной) концентрации, так как предназначены для непрофессиональной обработки. И если вам по тем или иным причинам не удалось уничтожить тараканов полностью, то они становятся устойчивыми к веществу, содержащемуся в купленном вами препарате.

После того как вы поняли, что средство, которым вы проводили самостоятельную обработку не дало результата вы решили пригласить санитарную службу, которая как обещает реклама «НА 100 % ИЗБАВИТ ВАС ОТ НАСЕКОМЫХ НАВСЕГДА», но решили, что обработки кухни будет достаточно, ведь в остальной квартире тараканов пока нет и стало быть обрабатывать там ненужно… После произведённой обработки тараканы благополучно перемещаются на необработанные участки квартиры не успев получить летальную дозу препарата. Поздравляем! У вас дома появилась популяция тараканов с приобретённой резистентность. Это значит, что следующая обработка подобным препаратом также будет безрезультативна.

Наконец спустя два месяца вы всё же решаетесь на обработку всей квартиры… и отвозите детей к бабушке, а кошку к соседке. И снова приглашаете службу, которая как написано в объявлении «ПРОВОДИТ ПРОФЕССИОНАЛЬНУЮ ОБРАБОТКУ ПО ДОСТУПНЫМ ЦЕНАМ» и готова обработать 3-х комнатную квартиру за 1000 рублей! К вам приезжает дезинфектор производит обработку, но спустя несколько недель результата снова нет! Большая часть тараканов по-прежнему бегает! Причиной здесь может быть заниженная в целях снижения себестоимости концентрация действующих веществ в рабочем растворе (ниже той которая заявлена в инструкции), которая не способна уничтожить большую часть паразитов. И теперь насекомые стали резистентные ещё к одному веществу или же к целой группе препаратов.

Чем ниже стоимость дезинсекционной обработки, тем ниже концентрация действующих веществ, в рабочем растворе которым будет произведения обработка.

Приведённая выше ситуация сильно утрирована, однако всё перечисленные в ней ошибки имеют место быть и на практике встречаются регулярно. Всё это приводят к тому что с каждым разом от насекомых становится всё сложнее и сложнее избавится. Поэтому прежде чем предпринимать какие быто ни было действия знайте, ЧТО ИМЕЮТСЯ ПРОТИВОПОКАЗАНИЯ И НЕ ЗАБУДЬТЕ ПРОКОНСУЛЬТИРОВАТЬСЯ СО СПЕЦИАЛИСТОМ.